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19 人阅读发布时间:2026-06-30 21:36
研究背景

体外嵌合抗原受体(CAR) T细胞疗法在治疗B细胞恶性血液肿瘤上取得了极大的成功,但是由于CAR-T细胞疗法需要获取患者自身的T细胞在体外进行改造,程序复杂、治疗周期长且价格昂贵,并且其对实体瘤的治疗效果有限,此外,CAR-T细胞疗法还会导致一些副作用,例如细胞因子释放综合征、神经毒性、脱靶效应、过敏反应以及继发性T细胞恶性肿瘤等。因此,迫切需要创新的策略来克服目前自体CAR-T细胞治疗所面临的重大挑战和局限性。
文献概要

基于上述背景,国际制药巨头赛诺菲公司开发了一种新型体内CAR-T平台,并将该研究成果发表在Molecular Therapy(IF:12)期刊上。该新型递送平台采用脂质纳米颗粒(LNP),将编码CD22 CAR的mRNA封装在内。在对LNP的设计中,优选了低毒性的“脂质15”作为核心载体,并严格把控mRNA的纯度以避免过度炎症反应。此外,还对LNP的粒径、表面电荷及PEG脂质等多项理化特性都经过严格地优化,优化了高效的内体逃逸,并避免肝脏清除以及非特异性细胞转染等情况。进一步,通过在LNP表面修饰抗CD8的纳米抗体(Nb8-H3)实现了其对CD8+T细胞的高度特异性靶向结合,提升LNP与T细胞的结合率和转染效率。体外实验证实了LNP转染T细胞后在体外发生了CAR表达,并可介导靶细胞杀伤。此外,在人源化Nalm6肿瘤小鼠模型上的实验进一步证实了,靶向的LNP介导了显著且特异性的CD8+T细胞转染,在小鼠体内产生了功能性CAR-T细胞,可实现安全重复给药并高效清除肿瘤。该体内CAR-T平台有效规避了自体CAR-T疗法耗时、昂贵等局限性,具备极高的临床应用潜力。

图1:图形概要
本研究中Amnis™成像流式系统的应用
检测CAR在T细胞上的表达
向CD8+T细胞中加入封装有22-V4编码mRNA的LNP,体外处理24H,利用LNP转染22-V4 CAR到T细胞上后,检测T细胞上CAR的表达,同时使用PBS处理后的CD8+T细胞作为对照组。使用FITC抗体染料标记CD8,使用PE染料标记CAR的表达,利用Amnis™成像流式系统检测CD8+T细胞,图2中的图像直观的呈现了,经LNP处理后,CD8+T细胞表面表达CAR。说明研究团队设计的22-V4编码mRNA的LNP可成功实现在CD8+T细胞上表达CAR分子。

图:Amnis™系统检测经LNP或PBS处理后,
T细胞表面的CAR的表达
检测表达CAR的CD8+T细胞
和肿瘤细胞之间形成的免疫突触
CAR-T细胞和肿瘤细胞之间形成的免疫突触的效率,与CAR-T细胞的临床疗效有极大关联。为了进一步验证重编程后表达22-V4 CAR的CD8+ T细胞是否能够与表达CD22的靶细胞之间形成CAR突触,将表达22-V4 CAR的CD8+ T细胞与经细胞增殖染料CTV染色的Nalm6细胞共培养,利用Amnis™成像流式系统检测两类细胞之间形成的免疫突触,如图3所示,可以直观地观察到CD8+ T细胞和肿瘤细胞形成的聚集体,并且在CD8+ T细胞和肿瘤细胞的接触界面之间可观察到有较强的CAR的表达,利用强大的软件可对这些形成的免疫突触进行精准的定量统计,进一步证实了靶向LNP转染CD8+ T细胞后,CAR-T细胞对肿瘤细胞的强大杀伤效果。

图3:Amnis™系统检测CAR-T细胞
和肿瘤细胞之间形成的免疫突触
小结

由于可规避传统自体CAR-T细胞疗法的诸多缺点,体内CAR-T研究热度在近些年来持续攀升。赛诺菲科研团队近期创新性地开发了一种安全可靠的体内CAR递送平台,并且体内重编程的CAR-T细胞展现出了高效的B细胞血液肿瘤杀效果,有望成为一种真正的“现成型”(off-the-shelf)CAR-T细胞疗法,克服目前获批的自体体外CAR-T疗法的重大障碍,具有极高的临床应用前景。
Amnis™成像流式系统不仅可以清晰地呈现出CAR在T细胞表面的表达,还能眼见为实检测出CAR-T细胞和肿瘤细胞间之间形成的免疫突触,高通量的检测加上强大的软件分析系统,使其可对CAR-T与肿瘤细胞之间形成的免疫突触进行定量的精准统计,更加高效、精确和客观地评估CAR-T细胞的杀伤效果,是检测CAR-T细胞的绝-佳利器!
参考文献:
Lemgart et al., Reprogramming CD22 CAR-T cells in vivo using CD8-targeted mRNA-LNPs to treat hematological malignancies, Molecular Therapy (2026).