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凭一己之力发表超过35篇文章,Cytek®全光谱流式细胞仪助推爱荷华大学井喷式成果

145 人阅读发布时间:2025-05-13 14:01

背景回顾

 

爱荷华大学(University of Iowa),作为美国公立研究型大学中的佼佼者,享有“公立常春藤”的美誉,是爱荷华州立大学系统的旗舰校。其学术版图中,医学、基因学、生物医药、药理学等众多领域成就斐然,享誉全球。为全方位加速科研进程,爱荷华大学先后引进7台Cytek® Aurora™全光谱流式系统,自此,研究团队如虎添翼,捷报频传,目前已累计发表了超过35篇高水平文章(见图1举例),应用方向涵盖免疫学、肿瘤学、感染免疫、炎性疾病等领域,取得了令人瞩目的科研成果。接下来,我们选择其中2篇文章进行解读。

 

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图1 – 爱荷华大学全光谱流式文献举例1-5

 

 

首次揭示miR-6236对缺血后骨骼肌血管生成

存在调控作用

 

外周动脉疾病(PAD)在全球范围内影响着超过2亿人,这是一种循环系统疾病,由于动脉粥样硬化引发动脉阻塞,导致下肢血流供应减少。目前针对PAD的临床治疗手段主要聚焦于降低血管动脉粥样硬化的发生风险上,但是,改善灌注不良这一关键性问题尚未得到解决。基因疗法的出现,让PAD治疗看到了希望的曙光。研究人员开始尝试将miRNA应用于PAD实验模型中,发现miRNA在缺血后灌注恢复的过程中确实起到了重要的调节作用。而在本研究中,研究人员首次鉴定出人体miR-6236的同源物,并明确了miR-6236在小鼠和人体中扮演着损害血管生成的“反派角色”。研究人员使用Cytek Aurora CS全光谱分选型流式细胞仪从小鼠肌肉组织单细胞中分选内皮细胞,并对接qPCR定量miR-6236的表达,发现在小鼠缺血骨骼肌的内皮细胞中miR-6236表达显著性上调(图2,Isch:缺血性的)。

Cytek Aurora CS全光谱分选型流式细胞仪同时搭载传统与全光谱 “双引擎”模式,软件一秒即可完成切换。上述研究的方案相对简单,可以采用传统模式,无需额外准备单染对照,无需调整补偿,上样后即可一键式完成分选实验。双模式特性使Aurora CS 系统既能轻松兼容传统流式的应用,将复杂实验简单化;也可以拓展实验更多可能性,帮助研究者们突破科学探索的界限。

 

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图2 –分选小鼠肌肉组织中内皮细胞并检测miR-6226表达

 

 

31色全光谱流式方案全景式

描绘人T细胞稳态表型

 

T细胞作为免疫系统中的“精锐部队”,在防御病毒入侵、维持机体免疫平衡和杀伤肿瘤细胞等过程中,发挥着至关重要的作用,这也解释了流式方案中T细胞频繁“亮相”的缘由。为了应对复杂的作战环境,T细胞蜕变出“七十二变”技能,不同的T细胞亚群分工有序,构建起人体免疫系统的坚固防线。OMIP-099采用Cytek Aurora全光谱分析型流式细胞仪,针对人类T细胞的不同亚群设计了31色精细化免疫分型方案。由于细胞经过刺激会引起部分指标表达丰度发生变化,本研究旨在监测细胞稳态下(即细胞不经过刺激),T细胞相应指标的表达图谱(图3)。

Cytek Aurora全光谱分析型流式细胞仪采用专利的全光谱分析(FSP)技术,先进的光学系统和低噪声的电子系统为仪器提供了卓越的灵敏度与分辨率,让一管超多色实验的梦想照进现实。Cytek® Cloud全新数字生态系统的加持,为全光谱流式研究提供从方案设计到数据采集的全方位支持,与Cytek Aurora全光谱流式系统无缝衔接,让高维流式实验化繁为简,直达清晰。

 

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图3 – 31色全光谱流式方案门控策略

 

总结展望

 

爱荷华大学从2019年开始引入Cytek全光谱流式细胞仪,实现了从传统流式到全光谱流式的华丽升级,自此开启了流式技术“新视界”。流式实验在颜色维度与数据质量上实现了质的突破,全光谱流式生态系统更是提供了全方位的解决方案。技术迭代加速成果突破,破晓极光释放无限潜能,曾经遥不可及的科研梦想,如今已触手可及。

 

Reference

1Mani, A. M. et al. miRNA-6236 Regulation of Postischemic Skeletal Muscle Angiogenesis. J Am Heart Assoc 13, e035923, doi:10.1161/JAHA.124.035923 (2024).

2Zacharias, Z. R. & Houtman, J. C. D. OMIP-099: 31-color spectral flow cytometry panel to investigate the steady-state phenotype of human T cells. Cytometry. Part A : the journal of the International Society for Analytical Cytology 105, 10-15, doi:10.1002/cyto.a.24799 (2024).

3van de Wall, S. et al. Dynamic landscapes and protective immunity coordinated by influenza-specific lung-resident memory CD8+ T cells revealed by intravital imaging. Immunity 57, doi:10.1016/j.immuni.2024.06.016 (2024).

4Shao, P. et al. TRAF3 is critical for initial T follicular helper cell specification via coordination of the IL-6R/IL-2R-BCL6 signaling nexus. Science immunology 10, eadr0517, doi:10.1126/sciimmunol.adr0517 (2025).

5Areecheewakul, S. et al. Immunomodulatory Effects of Subacute Inhalation Exposure to Copper Oxide Nanoparticles in House Dust Mite-Induced Asthma. ACS nano 17, 14586-14603, doi:10.1021/acsnano.3c01668 (2023).

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