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Big Panel Theory系列之—23色光谱流式方案全面解析胎盘MSC异质性

618 人阅读发布时间:2023-05-08 15:50

间充质基质细胞(Mesenchymal Stromal Cell, MSC)是一种异质细胞群,可从如骨髓、脂肪、脐带、胎盘等组织中分离提取,具有强大的分泌、免疫调节及归巢特性,在心肌梗塞、炎症性肠病、青光眼、骨关节炎等多种疾病中具有潜在应用价值。体外培养的MSC细胞通常依据国际细胞治疗学会(ISCT)推荐的最低表型标准(即表达CD73, CD90和CD105的,不表达CD31, CD34, CD45, HLA-DR等造血和内皮标志物)进行区分。然而,已有研究表明,MSC在体外培养条件下的表型变化可能掩盖其潜在功能与异质性,体外培养前的MSC表型分析将提供更丰富的功能信息。为此,奥克兰大学Anna Boss团队利用Cytek® Aurora(3激光)全光谱流式细胞仪开发了23色高维分析方案,发现了4种异质性胎盘间充质基质细胞(pMSC)亚群,并利用该方案的简化方案(15色)评估了培养pMSC的细胞来源,以及体外培养对其表型的影响。

Big Panel Theory系列之—23色光谱流式方案全面解析胎盘MSC异质性

图1. MSC细胞具有强大的分泌、免疫调节功能

 

 

 

方案设计

23色pMSC高维分析方案抗体列表如图2所示,分别包含经典文献中滋养层细胞、造血干细胞、内皮细胞、间充质细胞、成纤维细胞及祖细胞标志物。方案配色借助Cytek® Full Spectrum Viewer完成。23色方案(图2,Panel 1)用于发现pMSC异质性群体,15色简化方案(图2,Panel 2)用于评估pMSC经体外培养后的表型变化。

 

Big Panel Theory系列之—23色光谱流式方案全面解析胎盘MSC异质性

图2. pMSC高维分析方案抗体列表,Panel 1为23色方案,Panel 2为15色简化方案

 

样本制备流程如图3所示,胎盘外植体样本由胎盘绒毛组织中分离,经酶解、过滤、裂红步骤获取单细胞悬液后进行染色与流式检测。抗体滴定FMO对照被用于方案优化,以确定最佳抗体用量及区分阳性群体。

 

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图3. 胎盘绒毛核心细胞单细胞悬液制备流程

 

pMSC异质性分析

妊娠前三个月胎盘绒毛核心细胞样本23色光谱流式检测结果如图4所示,数据经排除碎片、黏连体、死细胞、滋养层细胞(ITCβ4+)、造血细胞(CD45+CD235a+)干扰后由viSNE降维展示(图4)。结合已知的细胞类群标志物表达图谱,可从viSNE降维数据中区分CD31+CD34+内皮细胞(类群1)以及4种异质性的MSC亚群(CD73+CD90+间充质细胞,类群2;CD146+CD271+血管周细胞,类群3;Podoplanin+CD36+细胞,类群4;CD26+CD90+肌成纤维样细胞,类群5)。其中,类群3-5与前期研究中的单细胞RNA测序结果一致,而类群2因其在妊娠9周后极低的丰度未能被单细胞RNA测序检出,低丰度细胞群体的发现凸显出光谱流式高通量高维分析性能优势

 

Big Panel Theory系列之—23色光谱流式方案全面解析胎盘MSC异质性

图4. 23色光谱流式检测方案揭示pMSC异质性

 

pMSC表型差异预示其功能多样性

为了探索各亚群在胎盘绒毛中的功能,研究人员对各亚群表型与功能进行了更深入的分析。例如,类群2是唯/一共表达CD73+CD90+的绒毛细胞类群,该类群还表达细胞迁移相关标志物Podoplanin,低表达凝血相关标志物CD142,且异质性表达血管周细胞标志物CD271、CD146,表明此类群可能是一种功能分化的类群,在早期妊娠中促进造血迁移和分化等;类群4由Podoplanin、CD36的表达确定,共表达CD26、CD90、CD142,由于该类群丰度最高,且表达增殖/迁移相关标志物(CD26/Podoplanin)(图5),研究人员推测该类群最有可能为体外培养后pMSC的主要来源。

 

Big Panel Theory系列之—23色光谱流式方案全面解析胎盘MSC异质性

图5. 绒毛核心亚群表型特征分析

 

体外培养pMSC表型评估

研究人员使用光谱流式15色简化方案(图2,Panel2)对体外培养MSC细胞进行检测,分析了体外培养MSC与原位状态下的表型差异。Pannel1中确认的CD73+CD90+细胞(类群2)、podoplanin+CD36+细胞(类群4)经分选后与外植体pMSC细胞在相同条件下培养7天,并进行光谱流式检测。检测结果(图6)表明,培养后的细胞发生表型收敛,表现出MSC细胞的特有表型(CD90+CD73+CD142+CD271-CD36-),但仍保留能够体现其来源的表型特征;外植体pMSC细胞经培养后,表型异质性降低,且与类群4细胞分选培养后的表型最为相似,进一步证明该类群为培养后pMSC细胞的主要来源。

 

Big Panel Theory系列之—23色光谱流式方案全面解析胎盘MSC异质性

图6. 类群2、4级外植体pMSC细胞经培养后的表性分析结果(Panel2)

 

   

总 结

本研究中,Anna Boss团队使用3激光Cytek® Aurora全光谱流式细胞仪搭建并优化了23色pMSC分析方案(已发表文献中最多色MSC流式检测方案),深度揭示了pMSC表型异质性以及经培养后的表型变化。该方案的搭建为MSC质控、培养条件优化等方面提供了宝贵的资源,更多方案细节,欢迎阅读文献原文。

参考文献:

Boss A L, Damani T, Wickman T J, et al. Full spectrum flow cytometry reveals mesenchymal heterogeneity in first trimester placentae and phenotypic convergence in culture, providing insight into the origins of placental mesenchymal stromal cells[J]. Elife, 2022, 11: e76622.

 

 

关于Cytek

Cytek Biosciences, Inc.(Nasdaq: CTKB)作为一家全球技术的生命科学技术公司,通过其受专利保护的全光谱分析(Full Spectrum Profiling™,FSP™)技术,提供高分辨率、高参数和高灵敏度的新一代细胞分析工具。Cytek的创新技术通过检测荧光信号的完整光谱信息,以实现更高水平更高灵敏度的多参数检测。Cytek的FSP™平台包括其核心仪器 —— Aurora和Northern Lights™分析系统、Aurora CS分选系统、试剂、软件和服务,为客户提供全面和完整的解决方案。Cytek总部位于美国加利福尼亚州Fremont,在全球设有分部和分销渠道。

更多的相关信息,请登录Cytek的官方网站:www.cytekbio.com和www.cytekbio.com.cn。

注:Cytek®, Tonbo Biosciences, cFluor®, Full Spectrum Profiling™, FSP™和Northern Lights™是Cytek Biosciences, Inc. 的商标或注册商标。Cytek®全光谱检测技术相关专利包括但不限于:US10739245B2,US11169076B2,US10788411B2。


 

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